クロマチンアクセシビリティ解析用のATAC-Seq

ATAC-Seq (Assay for Transposase-Accessible Chromatin with Sequencing)

ハイスループット機能を備え、ゲノム全体のアクセス可能なクロマチンを迅速かつ高感度にプロファイリングする手法

ATAC-Seqの図解

ATAC-Seqとは?

ATAC-Seq(Assay for transposase-accessible chromatin with sequencing)は、ゲノム全体のクロマチンアクセシビリティを決定するための一般的な方法です。オープンクロマチン領域をシーケンスすることで、ATAC-Seqはクロマチンのパッケージングやその他の要因が遺伝子発現にどのように影響するかを明らかにするのに役立ちます。

ATAC-Seqは、規制要素に関する事前知識を必要としないため、強力でエピジェネティックな探索ツールとなります。複雑な疾患、胚発生、T細胞活性化、がんにおけるクロマチンアクセシビリティ、転写因子結合、遺伝子制御の理解を深めるために用いられています1,2。ATAC-Seqは、バルク細胞集団やシングルセルに対して高解像度で実施できます。

ATAC-Seqプロトコール

ATAC-Seqの仕組みは?

ATAC-Seqでは、ゲノムDNAは高活性トランスポザーゼであるTn5に曝されます。Tn5は同時にDNAを断片化し、オープンクロマチン部位に優先的に挿入し、シーケンスプライマーを付加(タグメンテーションと呼ばれるプロセス)します。DNAのシーケンスによってオープンクロマチンを同定でき、データ解析によって遺伝子制御に対する洞察が得られます。

さらに、ATAC-Seqは、遺伝子発現を研究するためのマルチオミクスアプローチとして、RNAシーケンスなどの他の手法と組み合わせることができます3,4。後続の実験には、エピジェネティックな制御の形態をさらに特徴づけるために、ChIP-Seq、Methyl-Seq、Hi-C-Seqなどが用いられることがよくあります。

シングルセル向けATAC-Seqの適用方法

スタンフォード大学のDr. William Greenleafが、ATAC-Seqの開発とシングルセルへの適用について述べます。さらに、ゲノミクスとエピジェネティクスの専門家であるDr. Bing RenとDr. Sebastian Preisslが、コンビナトリアルインデックスを用いたシングルセルATAC-Seqについて述べます。

ウェビナーを視聴する

ATAC-Seqの主要なアプリケーション

ATAC-Seqによるクロマチンアクセシビリティ解析は、ゲノムの制御環境に対する貴重な知見を提供します。定評のあるアプリケーションは以下のとおりです。

  • ヌクレオソームマッピング
  • 転写因子結合解析
  • 新規エンハンサーの同定
  • 疾患関連の制御メカニズムの探索
  • 細胞型特異的制御解析
  • 進化学研究
  • 比較エピゲノミクス
  • バイオマーカーの発見

ATAC-Seqを用いた論文

T細胞における遺伝子制御

サイエンティストがATAC-Seqを用いてクロマチン状態に影響を与える制御因子を同定して遺伝子発現を制御する方法をご覧ください。

ATAC-Seqを使用したメタゲノムアセンブリの改善

研究者がATAC-Seqの実現可能性と利点を実証し、細菌ゲノムの研究を支援する方法をご紹介します。

がんにおけるゲノムアーキテクチャーの特性評価

サイエンティストがATAC-Seqを活用し、The Cancer Genome Atlasの15の原発性ヒトがんタイプを用いてがんのゲノムトポロジーの理解を深める方法をご覧ください。

次世代シーケンサーが遺伝子制御とトランスクリプトミクス研究を加速

RNA-Seqがさまざまな分野の遺伝子制御およびトランスクリプトミクス研究をどのように進めているか、また、遺伝子制御研究がどのように補完的な情報を提供できるかご紹介します。

eBookをダウンロード

ATAC-Seqの推奨カバレッジ

ATAC-Seqに必要な最低限のシーケンスカバレッジは研究目的によって異なります。この表には、一般的なアプリケーションに関するガイドラインが記載されています。

ATAC-Seqにはペアエンドリードを使用することを推奨します。シングルリードシーケンスと比較して、ペアエンドリードには次の利点があります。

  • 高いユニークアライメント率
  • PCRデュプリケートの除去を改善
  • アクセス可能なシーケンスに関する情報がより充実
  • リードをヌクレオソームフリー、モノヌクレオソーム、またはジヌクレオソームとして分類する精度が向上
ペアエンドシーケンスについて
研究目標 推奨深度
ヒトサンプルにおけるオープンクロマチンの違いの同定 5000万以上のペアエンドリード
遺伝子制御ネットワーク構築のための転写因子フットプリント解析 2億を超えるペアエンドリード
シングルセル解析 核/細胞あたり25,000~50,000のペアエンドリード

実験のニーズは多様であるため、科学文献を参照して、プロジェクトに適したカバレッジレベルを決定することをお勧めします。

マルチオミクスクイックスタート:シングルセルにおけるATAC-SeqおよびRNA-Seq

この動画では、シングルセルでATAC-SeqおよびRNA-Seqを実行し、遺伝子制御のメカニズムを表現型と結びつける方法をご紹介します。イルミナのサイエンティストが、サンプル調製、ライブラリー調製、シーケンスのベストプラクティスを説明し、最初のシングルセルマルチオミクスプロジェクトの開始をサポートします。

動画を視聴:マルチオミクスクイックスタート:シングルセルにおけるATAC-SeqとRNA-Seq

ATAC-Seqでは、複雑または希少な組織におけるエピジェネティックなばらつきや、これまでゲノムワイドレベルでは観察できなかった細胞集団におけるエピゲノムランドスケープを調べることができます。

補足資料

トランスクリプトームとエピゲノムのプロファイリング

このテクニカルノートでは、10x Genomics Chromium Single Cell Multiome ATAC + Gene Expressionsを使用したシングルセルからのトランスクリプトームとエピゲノムの同時プロファイリングについて説明しています。

シロイヌナズナ(A. thaliana)の遺伝子制御ランドスケープ

シロイヌナズナ(Arabidopsis thaliana)のシングルセルATAC-Seqに関するウェビナーにご参加ください。講演者は、植物の発生を制御する遺伝子ネットワークを推定するための分析フレームワークについて解説します。

シングルセルアプリケーションに向けたATAC-Seqの最適化

このウェビナーでは、業界の専門家が、scRNA-Seq、sNuc-Seq、ATAC-Seq、その他のアッセイのサンプル調製技術とベストプラクティスについての知見を示します。

がんエピジェネティクス

ATAC-Seqを使用して、がんのエピジェネティックな特徴を探索する方法と、開始に役立つガイド、製品、その他のリソースをご覧ください。

ATAC-Seqに関するよくある質問

サンプルの分離・調製後、Illumina Tagment DNA TDE1 Enzyme and Buffer KitsはPCR Master Mix、インデックスプライマー、精製ビーズなどの他の試薬と併用できます。これらは別途購入する必要があります。
ATAC-Seqと類似するその他の手法には、FAIRE-SeqやDNase-Seqなどがあります。これらの方法と比較して、ATAC-Seqはよりシンプルなプロトコールを使用しており、必要なサンプルインプットが少なく(約半分の細胞数)、高感度であるため、より迅速で費用対効果の高いアプローチとなる可能性があります。
マルチオミクスの使用は、生物学の理解を深めるための有効な手段となり得ます。ATAC-Seqと組み合わせることで、トランスクリプトミクスなどの技術は、ゲノムのアクセス可能な領域で遺伝子転写を確認(RNA-Seqを使用)する独自のアプローチを提供できます。このクイックスタート動画では、エピジェネティクスとトランスクリプトミクスの研究により、環境に対する細胞応答の理解がどのように深まるかを詳細に説明します。
ATAC-Seqに適したプラットフォームの選択は、お客様の全体的なニーズによって異なります。NextSeq 2000システムおよびNovaSeq Xシリーズは、お客様のニーズに合わせて優れたカスタマーサービスとともに、幅広いNGS機能を提供します。
イルミナは、データを解析するために、Partek FlowソフトウェアDRAGEN Single Cell ATACなどのユーザーフレンドリーなバイオインフォマティクスソフトウェアアプリケーションを提供しています。
参考文献
  1. Cusanovich DA, Reddington JP, Garfield DA, et al. The cis-regulatory dynamics of embryonic development at single-cell resolution. Nature. 2018; 555:538-542. 13.
  2. Gate RE, Cheng CS, Aiden AP, et al. Genetic determinants of co-accessible chromatin regions in activated T-cells across humans. Nat Genet. 2018; 50:1140-1150.
  3. Luo L, Gribskov M, Wang S. Bibliometric review of ATAC-Seq and its application in gene expression. Briefings Bioinform. 2025;23:1-13. doi: 10.1093/bib/bbac061.
  4. Cao J, Cusanovich DA, Ramani V, et al. Joint profiling of chromatin accessibility and gene expression in thousands of single cells. Science. 2018;361:1380-1385.