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Nexteraテクノロジーにより、DNA断片化とシーケンスアダプター付加をシングルチューブ内の酵素反応により同時に行うことができます。Nextera XTは、わずか1 ngという極めて少ないDNAインプット量に対応しており、さまざまなサンプルの解析を可能にします（アンプリコンの最少インプット量は300 bp長です）。
Nextra XTライブラリーにつき384サンプルまでマルチプレックス化が可能なため、ハイスループットを必要とするプロジェクトにも対応できます。Nextera XTは、革新的なビーズベースのノーマライゼーションを採用しているため、サンプルのプールとシーケンスの前のライブラリー定量ステップの必要がありません。Nextera XTにより調製されたライブラリーはイルミナの全てのシーケンサーに対応しています。
For high-throughput research, bead-based normalization can save time and resources by providing an accelerated path from DNA to data. This technical note provides guidelines and data comparing the two normalization methods to help you decide which option to use.
Read Tech Note
| 装置 | 推奨サンプル数 | リード長 |
|---|---|---|
| MiSeq System | Up to 384 samples per run | Up to 2 x 300 bp |
| NextSeq 550 System | Up to 384 samples per run | Up to 2 x 150 bp |
Single-cell mRNA-Seq with the MiSeq and HiSeq Systems is enabling Allen Institute researchers to classify V1 neural cells.
Read MoreGenomic studies with the HiSeq and MiSeq Systems are enabling researchers to track Ebola outbreaks and understand the impact of the virus’s rapid mutation rate.
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The combination of Nextera XT and rapid sequencing with the MiSeq System provides a comprehensive DNA to data workflow in only 8 hours.
The Nextera XT Library Preparation Kit eliminates the need for library quantification before sample pooling and sequencing. Libraries of equivalent concentrations are created by employing bead-based sample normalization, as simple as pipetting 5 μl of each library to be sequenced.
Nextera Library Validation and Cluster Density Optimization
Technical Note | PDF < 1 MB
Technical Note | PDF < 1 MB
Nextera XT Library Prep: Tips and Troubleshooting
Technical Note | PDF < 1 MB
Sequencing the Rapidly Evolving Influenza A Virus on the MiSeq System
Application Note | PDF < 1 MB
Nextera XT DNA Library Preparation Kit
Data Sheet | PDF < 1 MB
ヒト全ゲノムシーケンスからアンプリコン、プラスミド、微生物ゲノムまで、幅広いアプリケーションに対応した短時間の完結したワークフロー。
このライブラリー調製キットは、業界で最も少ないDNAインプット量で最長12 kbまでのメイトペアライブラリーをゲルフリーの手法で作製できます。
Generate whole-genome sequencing libraries and efficiently interrogate samples with limited available DNA.
